實時熒光定量PCR的使用步驟
1 樣品RNA的抽提
①取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鍾使其*溶解。
②兩(liang) 相分離 每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的氯仿,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體(ti) 15秒後,15到30℃孵育2到3分鍾。4℃下12000rpm離心15分鍾。離心後混合液體(ti) 將分為(wei) 下層的紅色酚氯仿相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配於(yu) 水相中。水相上層的體(ti) 積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。
③RNA沉澱 將水相上層轉移到一幹淨無RNA酶的離心管中。加等體(ti) 積異丙醇混合以沉澱其中的RNA,混勻後15到30℃孵育10分鍾後,於(yu) 4℃下12000rpm 離心10分鍾。此時離心前不可見的RNA沉澱將在管底部和側(ce) 壁上形成膠狀沉澱塊。
④RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入至少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配製),清洗RNA沉澱。混勻後,4℃下7000rpm離心5分鍾。
⑤RNA幹燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉澱在室溫空氣中幹燥5-10分鍾。
⑥溶解RNA沉澱 溶解RNA時,先加入無RNA酶的水40μl用槍反複吹打幾次,使其*溶解,獲得的RNA溶液保存於(yu) -80℃待用。
2 RNA質量檢測
1)紫外吸收法測定
先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調零。然後取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)後,讀取其在分光光度計260nm和280nm處的吸收值,測定RNA溶液 濃度和純度。
① 濃度測定
A260下讀值為(wei) 1表示40 ?g RNA/ml。樣品RNA濃度(?g/ml)計算公式為(wei) :A260 ×稀釋倍數× 40 ?g/ml。具體(ti) 計算如下:
RNA溶於(yu) 40 ?l DEPC水中,取5ul,1:100稀釋至495?l的TE中,測得A260 = 0.21
RNA 濃度= 0.21 ×100 ×40 ?g/ml = 840 ?g/ml 或 0.84 ?g/?l
取5ul用來測量以後,剩餘(yu) 樣品RNA為(wei) 35 ?l,剩餘(yu) RNA總量為(wei) :
35 ?l × 0.84 ?g/?l = 29.4 ?g
②純度檢測
RNA溶液的A260/A280的比值即為(wei) RNA純度,比值範圍1.8到2.1。
2)變性瓊脂糖凝膠電泳測定
①製膠
1g瓊脂糖溶於(yu) 72ml水中,冷卻至60℃,10 ml的10× MOPS電泳緩衝(chong) 液和18 ml的37% 甲醛溶液(12.3 M)。
10×MOPS電泳緩衝(chong) 液
濃度 成分
0.4M MOPS,pH 7.0
0.1M 乙酸鈉
0.01M EDTA
灌製凝膠板,預留加樣孔至少可以加入25 ?l溶液。膠凝後取下梳子,將凝膠板放入電泳槽內(nei) ,加足量的1×MOPS電泳緩衝(chong) 液至覆蓋膠麵幾個(ge) 毫米。
②準備RNA樣品
取3?gRNA,加3倍體(ti) 積的甲醛上樣染液,加EB於(yu) 甲醛上樣染液中至終濃度為(wei) 10?g/ml。加熱至70℃孵育15分鍾使樣品變性。
③電泳
上樣前凝膠須預電泳5min,隨後將樣品加入上樣孔。5-6V/cm電壓下2h,電泳至溴酚蘭(lan) 指示劑進膠至少2-3cm。
④紫外透射光下觀察並拍照
28S和18S核糖體(ti) RNA的帶非常亮而濃(其大小決(jue) 定於(yu) 用於(yu) 抽提RNA的物種類型),上麵一條帶的密度大約是下麵一條帶的2倍。還有可能觀察到一個(ge) 更小稍微擴散的帶,它由低分子量的RNA(tRNA和5S核糖體(ti) RNA)組成。在18S和28S核糖體(ti) 帶之間可以看到一片彌散的EB染色物質,可能是由mRNA和其它異型RNA組成。RNA製備過程中如果出現DNA汙染,將會(hui) 在28S核糖體(ti) RNA帶的上麵出現,即更高分子量的彌散遷移物質或者帶,RNA的降解表現為(wei) 核糖體(ti) RNA帶的彌散。用數碼照相機拍下電泳結果。
3 樣品cDNA合成
①反應體(ti) 係
序號 反應物 劑量
1 逆轉錄buffer 2μl
2 上遊引物 0.2μl
3 下遊引物 0.2μl
4 dNTP 0.1μl
5 逆轉錄酶MMLV 0.5μl
6 DEPC水 5μl
7 RNA模版 2μl
8 總體(ti) 積 10μl
輕彈管底將溶液混合,6000rpm短暫離心。
②混合液在加入逆轉錄酶MMLV 之前先70℃幹浴3分鍾,取出後立即冰水浴至管內(nei) 外溫度一致,然後加逆轉錄酶0.5μl,37℃水浴60分鍾。
③取出後立即95℃幹浴3分鍾,得到逆轉錄終溶液即為(wei) cDNA溶液,保存於(yu) -80℃待用。
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